quarta-feira, 26 de janeiro de 2022

 

  • Análise de genomas de todas as cinco espécies de rinocerontes existentes e três extintas
  • Forte suporte filogenômico para a hipótese geográfica da evolução do rinoceronte
  • Divisão basal entre linhagens africanas e eurasianas no início do Mioceno (~16 milhões de anos)
  • Embora todos os rinocerontes tenham baixa diversidade genômica, ela é mais baixa nos modernos

Resumo

Apenas cinco espécies de Rhinocerotidae, outrora diversas, permanecem, tornando a reconstrução de sua história evolutiva um desafio para os biólogos desde Darwin. Sequenciamos genomas de cinco espécies de rinocerontes (três extintas e duas vivas), que comparamos com dados existentes das três espécies vivas restantes e uma variedade de grupos externos. Identificamos uma divergência inicial entre as linhagens africanas e euro-asiáticas existentes, resolvendo um debate chave sobre a filogenia dos rinocerontes existentes. Este início do Mioceno (~16 milhões de anos atrás [mya]) dividiu pós-datas a formação da ponte de terra entre as massas de terra afro-árabe e euro-asiática. Nossas análises também mostram que, enquanto os genomas de rinocerontes em geral exibem baixos níveis de diversidade genômica, a heterozigosidade é menor e a endogamia é maior nas espécies modernas. Esses resultados sugerem que, embora a baixa diversidade genética seja uma característica de longo prazo da família, ela foi particularmente exacerbada recentemente, provavelmente refletindo os recentes declínios populacionais causados ​​pelo homem.

Resumo gráfico

Keywords

Introduction

Compreender as relações entre as espécies de rinocerontes e quando elas divergiram tem sido uma questão abordada por biólogos evolucionistas desde os primórdios do campo. O próprio Darwin discutiu o tema em 1842 como um dos poucos exemplos em seu pequeno tratado sobre evolução que precedeu A Origem das Espécies em 1859 ( ). Embora os rinocerontes já tenham sido um clado diversificado, os rinocerontes existentes compreendem apenas cinco espécies, todas altamente ameaçadas e prioridades globais para conservação. Rhinocerotoidea, o clado que inclui a família dos rinocerontes (Rhinocerotidae), divergiu das antas 55-60 milhões de anos atrás (mya) na Eurásia ou na América do Norte ( ). A família posteriormente se irradiou em pelo menos 100 espécies distribuídas pela África, Eurásia, América do Norte e Central. ) e incluiu alguns dos maiores mamíferos terrestres que já viveram. A maioria dos rinocerotídeos foi extinta antes do Pleistoceno, com apenas nove espécies sobrevivendo no Pleistoceno Superior, durante o qual ocorreram extinções adicionais. Estes consistem nas cinco espécies existentes, bem como o agora extinto unicórnio siberiano ( Elasmotherium sibiricum ), o rinoceronte da Merck ( Stephanorhinus kirchbergensis ) e seu parente Stephanorhinus hemitoechus (não estudado aqui), e o rinoceronte lanudo ( Coelodonta antiquitatis ).
Apesar de décadas de estudo, questões fundamentais permanecem sobre as relações evolutivas entre as espécies de rinocerontes existentes e seus parentes recentemente extintos. Além disso, várias espécies de rinocerontes carecem de recursos genômicos disponíveis que permitiriam aplicações, incluindo monitoramento baseado em DNA, gerenciamento de conservação e estudos de DNA ambiental. Para abordar essas questões e necessidades, analisamos um conjunto de dados do genoma representando oito espécies de rinocerontes ( Figura 1 ), incluindo todos os sete gêneros que sobreviveram no Pleistoceno Superior (
). Nossos dados incluem as cinco espécies de rinocerontes existentes representadas por quatro de novo de conjuntos de genomas Diceros bicornis ), branco ( Ceratotherium simum ), Sumatra ( Dicerorhinus sumatrensis ) e rinoceronte de um chifre maior ( Rhinoceros unicornis , também conhecido como indiano) e um genoma ressequenciado de um rinoceronte de Java ( R. sondaicus ). O genoma do rinoceronte de Java foi recuperado de um espécime de museu datado de 1838 e ressequenciado com alta cobertura (25×). Além disso, sequenciamos os genomas de três espécies de rinocerontes extintos de fósseis do Pleistoceno Superior que estão próximos ou além do limite de datação por radiocarbono de ~50 mil anos atrás (kya), especificamente um unicórnio siberiano, um rinoceronte da Merck e um lanudo rinoceronte, sequenciado para cobertura de 9×, 12× e 35×, respectivamente ( Tabela S1 ).
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Figura 1 Faixas das oito espécies de rinocerontes estudadas

Results

 Resolving the rhinoceros phylogeny

Três hipóteses foram propostas para explicar as relações filogenéticas dentro dos Rhinocerotidae vivos: (1) a “hipótese do chifre”, que agrupa as espécies de rinocerontes de dois chifres, especificamente colocando o rinoceronte de Sumatra como irmão do Diceroti Africano (rinoceronte preto e branco) e tem sido apoiado pela morfologia ( ), genética (por ex. ), e análises paleoproteômicas do esmalte dentário ( ); (2) a “hipótese geográfica”, que coloca as espécies asiáticas juntas, com Sumatra como irmã dos maiores rinocerontes de um chifre e de Java, e é baseada em evidências morfoanatômicas ( ), parcimônia biogeográfica, análises genéticas usando um número limitado de loci ( ; ; ; ), e análise paleoproteômica usando sequências de colágeno (
); e (3) uma hipótese de que o rinoceronte de Sumatra é irmão do clado que compreende as outras quatro espécies existentes, que foi apoiada por uma análise mais recente de genomas mitocondriais completos (
). Essas hipóteses conflitantes enfatizam as limitações do uso de marcadores de baixa resolução na reconstrução de relações evolutivas dentro de Rhinocerotidae e destacam o potencial de aplicação de abordagens filogenômicas. Estudos anteriores também debateram a colocação filogenética das três espécies extintas incluídas neste estudo. Por exemplo, a relação dos rinocerontes lanudos e da Merck entre si, o rinoceronte de Sumatra e os dois Diceroti africanos permaneceu controversa devido a conclusões contrastantes extraídas de evidências morfoanatômicas versus mitogenômicas e paleoproteômicas.
; ; ; ).
Para contornar o problema dos vieses do genoma de referência ( ;
; Figuras S1 A e S1B), conduzimos alinhamentos de genoma completo para as oito espécies de rinocerontes usando o cavalo doméstico ( Equus caballus ) como grupo externo. Em seguida, inferimos uma árvore de espécies de todo o genoma resumindo o sinal filogenético de árvores de genes individuais com base em 22.066 janelas genômicas de 100 kb. Nossa análise filogenômica identificou três clados principais dentro da subfamília Rhinocerotinae e forneceu forte suporte para a hipótese geográfica da evolução do rinoceronte. Um clado que compreende as duas espécies africanas Diceros bicornis e Ceratotherium simum , o Diceroti, é a linhagem irmã dos demais rinocerontes em nosso conjunto de dados (com exceção do unicórnio siberiano). Um segundo clado inclui os rinocerontes de Sumatra, Merck e lanudos (doravante referido como o Dicerorhinus-Coelodonta-Stephanorhinus [ DCS ]), todos com faixas geográficas atuais ou passadas que incluem partes da Ásia. O terceiro clado inclui as duas rinocerontes espécies Figura 2 A). Assim, a principal divergência entre as linhagens de rinocerontes está relacionada à divisão geográfica entre espécies nos continentes africano e euro-asiático.
Nossas análises filogenômicas confirmam conclusões anteriores baseadas em evidências morfológicas e biomoleculares ( Figura 2 A) que colocam o extinto unicórnio siberiano como grupo externo à subfamília Rhinocerotinae (P.-OA, dados não publicados; ; ). Dentro do DCS , encontramos forte apoio ao rinoceronte de Sumatra como irmão do clado que inclui os extintos Merck e rinocerontes lanudos. Um desafio restante é entender as relações de espécies extintas mais antigas, para as quais o DNA permanece irrecuperável. Como nossos achados sugerem que os resultados baseados puramente na morfologia (a hipótese do chifre) não são suportados, tentar preencher o resto da filogenia com base apenas na morfologia de táxons extintos pode ser difícil.

 Fluxo gênico entre espécies

Embora tenhamos sido capazes de resolver uma árvore de espécies de rinocerontes em todo o genoma, descobrimos discordância filogenética significativa nos genomas de rinocerontes, sugerindo fluxo gênico ou classificação de linhagem incompleta (ILS) entre os táxons. Embora essa topologia represente o sinal dominante das relações de espécies em todo o genoma, as análises de cromossomos individuais nem sempre recuperaram a mesma topologia ( Figura S1 C). Mais proeminentemente, observamos que a posição da espécie-árvore do DCS foi suportada por apenas ~45% das árvores individuais de janela deslizante, o que é substancialmente menor do que o recuperado para outros nós na filogenia ( Figura 2 B). Como uma região genômica de 100 kb de comprimento pode conter vários pontos de quebra de recombinação, também inferimos árvores de genes usando alinhamentos de 5 kb aleatoriamente subamostrados de dentro de cada janela deslizante de 100 kb. Os resultados corroboraram a discordância filogenética descoberta no conjunto de dados inicial ( Figura S1 D). Em seguida, simulamos a distribuição da árvore gênica esperada sob uma hipótese de deriva genética com ILS e comparamos com os dados empíricos. Encontramos discordância entre os dados simulados e empíricos, sugestivos de ILS e fluxo gênico como a causa da diminuição do suporte para a árvore de espécies. Encontramos nos dados empíricos um excesso de topologias de árvores gênicas apoiando a colocação do rinoceronte de Sumatra como irmão de outras espécies da subfamília Rhinocerotinae, como observado anteriormente em algumas filogenias mitocondriais (
; ; Figura 2B).
Para explorar ainda mais as origens das discordâncias filogenômicas, usamos análises de estatística D para diferenciar eventos de fluxo gênico antigos de ILS (
). O uso deste método pode ser problemático quando aplicado a espécies relativamente divergentes devido tanto a possíveis violações em suposições como taxas de mutação iguais e o modelo de sítios infinitos e vieses derivados do mapeamento de dados resequenciados para um genoma de referência ( Figuras S2 A e S2B ). Apesar dessas fontes potenciais de erro, as estatísticas D são congruentes com as análises filogenômicas ao sugerir que o fluxo gênico e ILS ocorreram entre os ancestrais das espécies Diceroti e Rhinoceros ( Figuras 2 B e 2C). Esse fluxo gênico pode ter sido possibilitado pela origem eurasiana de ambas as espécies africanas (
;
,
). Our analyses also revealed an excess of shared derived alleles between the two extinct members of the DCS clade (Merck’s and woolly rhinoceroses) and both representatives of Rhinoceros, suggesting gene flow between these two pairs of lineages. We found no evidence of excess shared derived alleles between the Sumatran rhinoceros and either Rhinoceros species (Figure S2D), despite their closer geographic proximity (Figure 1). This suggests either no gene flow or similar levels of gene flow between the Sumatran rhino and both Rhinoceros species. These differential patterns of gene flow may explain the discrepancy of the phylogenetic placement of the Sumatran rhinoceros as sister to the genus Rhinoceros based on nuclear DNA versus sister to all other members of the subfamily Rhinocerotinae in some mitochondrial phylogenies (
; ).

 Tempo de divergência entre espécies

Usamos dados fósseis para calibrar nossa filogenia e estimar os tempos de divergência de linhagem ( Figura 2 A). Isso resultou em uma estimativa de ∼65 mya para o ancestral comum de cavalos, antas e rinocerontes e uma estimativa de ∼36 mya para o ancestral comum da extinta subfamília de rinocerontes Elasmotheriinae e da subfamília existente Rhinocerotinae. Os três principais clados dentro da subfamília Rhinocerotinae divergiram cerca de 16 milhões de anos ( Figura 2 A), no final do início do Mioceno e por volta do período ideal climático do Mioceno (17–14 milhões de anos), um período que foi de aproximadamente 3°C– 4°C mais quente do que o presente ( ; ). A diversificação ocorreu após a formação da conexão terrestre entre as massas de terra afro-árabe e euro-asiática ∼20 mya ( ). Nossa hipótese é que essa ponte terrestre permitiu eventos de dispersão seguidos de vicariância, como está bem documentado com a imigração para a África da Eurásia dos primeiros rinocerotídeos, girafídeos, suídeos e viverrídeos e a emigração da África para a Eurásia de macacos, deinotheres e elefantóides, entre outras ( ).

 Drivers of low genetic diversity

Estudos genômicos anteriores em rinocerontes pretos, brancos e de Sumatra identificaram baixos níveis de diversidade genética. ; ; ). Esses achados são consistentes com a observação de que todas as espécies de rinocerontes existentes passaram por declínios recentes no tamanho da população, embora algumas espécies (rinocerontes brancos e maiores de um chifre) tenham se recuperado. ; ; ). No entanto, a baixa diversidade genética também pode ser consequência de características particulares da história de vida e/ou pequeno tamanho populacional de longo prazo. , ;
). Para investigar isso, calculamos a heterozigosidade do genoma (GWH) para todas as oito espécies de rinocerontes e comparamos essas estimativas com GWH em uma variedade de outras espécies animais, incluindo ruminantes e, mais amplamente, mamíferos. Avaliamos se os níveis de GWH são mais baixos em genomas recuperados de animais atuais (ou seja, preto, branco, rinoceronte de um chifre maior e rinocerontes de Sumatra) em comparação com GWH em genomas recuperados de espécimes que antecedem os declínios mediados por humanos durante o últimos 100 anos (ou seja, o genoma do rinoceronte de Java de quase 180 anos, bem como os genomas das três espécies extintas).
Estimamos GWH com base em transversões apenas para limitar a influência potencial de danos no DNA nas estimativas dos genomas antigos e históricos. No entanto, para comparabilidade com os resultados publicados para outros táxons, que incorporam todos os locais variáveis, recalibramos nossas estimativas com base na proporção esperada de transição/transversão (consulte a Figura S3 A). Nossos resultados mostraram que os genomas de rinocerontes atuais exibem GWH significativamente menor em comparação com os genomas históricos de Java e extintos (ANOVA de uma via, n = 8, F = 7,4, p = 0,04). Por outro lado, nossa comparação com uma ampla gama de animais mostra que os rinocerontes em geral exibem níveis comparativamente baixos de GWH, especialmente em relação não apenas ao conjunto de dados combinado de todos os animais, mas também de ruminantes e outros grandes herbívoros ( Figura 3 A). A única família de mamíferos que exibiu níveis médios mais baixos de GWH foi a Felidae ( Figura S3 B), o que não é inesperado, pois carnívoros/predadores são geralmente menos abundantes que herbívoros/presas (
). Esses achados são robustos para a escolha do genoma de referência usado em nossas análises (veja a Figura S3 C).
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Figura 3 Comparação da heterozigosidade de todo o genoma estimada em vários táxons e distribuição de ROH nas oito espécies de rinocerontes
Para melhor contextualizar os níveis observados de GWH, caracterizamos os níveis de endogamia em nossos genomas por meio de distribuições de corridas de homozigose (ROH). Para avaliar a robustez de nossos resultados, primeiro exploramos o efeito da exclusão de transições na inferência ROH ( Figura S4 A). Esta análise indicou que uma dependência apenas de transversões desloca a distribuição de segmentos ROH para trechos mais longos, mas que isso é apenas um problema para espécies com baixo GWH geral. Uma vez que todos os genomas resequenciados (Javan, unicórnio siberiano, Merck e rinoceronte lanudo) exibem maior GWH do que pelo menos três dos de novo (preto, branco, Sumatra e rinoceronte de um chifre maior), uma dependência apenas de transversões pois esses indivíduos podem inflar artificialmente o comprimento dos segmentos ROH, mas não devem influenciar nossas interpretações gerais.
Não detectamos nenhum segmento ROH no unicórnio siberiano, o que pode refletir sua distância filogenética excepcional ao genoma do rinoceronte branco contra o qual foi mapeado, inflando artificialmente os sítios heterozigotos ( Figura S3 C). Em contraste, segmentos ROH > 2 Mb foram detectados em todas as outras espécies de rinocerontes, onde todas as espécies, exceto o rinoceronte lanudo, também exibiram trechos de até 5 Mb. No entanto, observamos níveis de endogamia significativamente mais altos (ANOVA de uma via, n = 7, F = 36,7, p = 0,002), que são proporcionais ao comprimento total dos segmentos ROH, nos genomas de rinocerontes atuais em comparação com os genomas dos históricos Javan e extintos Merck's e rinocerontes lanudos ( Figura 3 B).
No geral, as comparações de GWH e níveis de endogamia sugerem que declínios populacionais recentes causados ​​por forte pressão antrópica no século 20 (por exemplo, ) resultou em perdas acentuadas na diversidade genética, bem como no aumento dos níveis de endogamia. No entanto, os genomas de espécies históricas e extintas, que foram amostrados antes de seu recente colapso populacional ou muitos milhares de anos antes de sua extinção, também exibem baixos níveis de GWH quando comparados a outras espécies animais ( Figura 3 A). Além disso, a observação de uma quantidade moderada de longos segmentos ROH nos genomas dos rinocerontes Javan, Merck e lanudos é consistente com a endogamia dessas espécies. Assim, levantamos a hipótese de que a diversidade genética limitada e os níveis moderados de endogamia são características intrínsecas da história de vida do rinoceronte, onde baixas densidades populacionais e dispersão limitada resultam em aumento da deriva genética, bem como acasalamento ocasional entre parentes.

 Demografia e carga mutacional

Para avaliar ainda mais o fundo genômico do baixo GWH geral e níveis moderados de endogamia em Rhinocerotidae, modelamos mudanças no tamanho efetivo da população (N e ) em todo o Pleistoceno usando o modelo coalescente sequencialmente markoviano (PSMC) em pares ( ; Figura 4 ). Embora estudos anteriores tenham reconstruído as histórias demográficas de um subconjunto de espécies, incluindo o rinoceronte negro ( ), rinoceronte branco ( ), rinoceronte de Sumatra ( ), e rinoceronte lanudo ( ), nossa análise combinada permite a exploração de respostas compartilhadas e únicas ao longo do tempo. No geral, é impressionante que todas as oito espécies apresentaram um decréscimo contínuo geral em N e nos últimos dois milhões de anos ou um N e em longos períodos de tempo.
Estudos anteriores sugeriram que a manutenção de um tamanho populacional baixo por longos períodos de tempo permite a eliminação de alelos deletérios, mantendo baixos níveis de diversidade genética em todo o genoma. , ; ). Nossa descoberta de que todas as espécies de rinocerontes tiveram um pequeno N e durante longos períodos de sua história poderia indicar um cenário semelhante.
Para investigar como a carga mutacional em Rhinocerotidae se compara a outras espécies, calculamos razões de perda de função (LoF; geralmente altamente deletério) versus mutações sinônimas para sete das espécies de rinocerontes e 30 espécies de mamíferos de diversos clados ( Tabela S4 ). Os resultados mostram que os níveis de carga mutacional em rinocerontes estão dentro da faixa observada entre outros mamíferos atuais ( Figura 5 ). No entanto, os genomas de rinocerontes extintos e históricos (unicórnio siberiano, rinoceronte lanoso e rinoceronte de Java) exibiram um número significativamente maior de mutações LoF ( Figura 5 ; ANOVA unidirecional, n = 7, F = 29,0, p = 0,003) em comparação com o genomas de rinocerontes atuais (ou seja, rinocerontes pretos, brancos, Sumatra e maiores de um chifre). Portanto, não encontramos evidências de um acúmulo de carga mutacional nas últimas décadas para as espécies que passaram por declínios populacionais recentes. Embora especulativo, nós, portanto, hipotetizamos que os rinocerontes existentes podem ter sofrido alguma purga de carga mutacional em conexão com seus declínios demográficos nos últimos 100 anos. No entanto, essa hipótese requer mais testes, por exemplo, por meio de comparações intra-específicas de genomas históricos e modernos que abrangem esses declínios e, em alguns casos, recuperações. ; ). Enquanto isso, vale a pena notar que algumas das espécies usadas na análise foram mapeadas em suas espécies intimamente relacionadas com genomas de referência disponíveis, e as qualidades das montagens e anotações do genoma também variam entre as espécies, o que pode influenciar a precisão do gene. estimativa de efeito.
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Figura 5 Efeito variante do genoma de uma ampla gama de espécies de mamíferos

Discussion

Nosso conjunto de dados de genoma de rinocerontes combinado representa um recurso valioso para o estudo atual e futuro da evolução e biologia dessas espécies, incluindo a caracterização da base genética dos fenótipos de rinocerontes ( Tabela S5 ). Por exemplo, descobrimos mutações de mudança de quadro no IFT43 (transporte intraflagelar 43) que podem contribuir para a deficiência visual dos rinocerontes. O IFT43 está envolvido na formação e manutenção dos cílios, que são importantes para o desenvolvimento e função do tecido sensível à luz na parte posterior do olho (a retina) ( ).
No caso do rinoceronte de Javan e de um chifre maior, nossas sequências genômicas também fornecem uma base para análises genéticas de conservação de espécies específicas. Ao analisar esse conjunto de dados, resolvemos um debate de longa data relacionado à história evolutiva de rinocerontes vivos e recentemente extintos e fornecemos evidências de que heterozigose genômica relativamente baixa e níveis moderados de endogamia podem representar seu estado natural de longo prazo. Esses achados sugerem que os baixos níveis de diversidade e alta endogamia observados nos genomas de rinocerontes atuais podem ser atribuídos apenas parcialmente a declínios recentes. Isso pode ser uma notícia positiva para a conservação, pois implica que declínios recentes podem ter tido menos impacto sobre os aspectos genéticos da viabilidade populacional do que se pensava anteriormente. No entanto, os rinocerontes existentes, sem dúvida, enfrentam enormes desafios no futuro, principalmente devido aos efeitos antropogênicos e ambientais. Uma das principais prioridades para a conservação dos rinocerontes será deter a caça ilegal e garantir que haja capacidade de carga suficiente para a recuperação da população. Nosso estudo destaca como a genômica pode complementar essas ações, permitindo o monitoramento de mudanças contínuas na variação genética, endogamia e carga mutacional.

 Limitações do Estudo

Dada a natureza histórica e antiga dos espécimes de quatro das espécies estudadas, sua qualidade de DNA não era adequada para de novo montagem assim, suas sequências genômicas foram recuperadas por meio de mapeamento contra outras espécies. Esse processo pode introduzir vieses nas análises a jusante que podem surgir devido a eficiências de mapeamento diferencial influenciadas pela distância filogenética do genoma de referência, danos no DNA antigo e comprimentos de leitura curtos. Portanto, embora tenhamos tomado várias medidas para amenizar tais influências, destacamos que isso deve ser lembrado. Além disso, deve-se notar que a família dos rinocerontes já foi um grupo especioso, e apenas uma pequena fração deles foi estudada aqui. Assim, dado que não temos sequências genômicas da maioria do clado, claramente restará uma enorme lacuna que precisa ser preenchida antes que possamos entender completamente a história evolutiva da família dos rinocerontes.

STAR★Methods

 Tabela de recursos-chave

REAGENTE ou RECURSO FONTE IDENTIFICAR
Amostras biológicas
rinoceronte de Java Este estudo NHM, UiO 734; NCBI: txid102233
O rinoceronte da Merck Este estudo F-4160; NCBI:txid2003782
Unicórnio Siberiano Este estudo IPAE 915/2804; NCBI: txid2491732
Rinoceronte lanoso Este estudo ND036; NCBI: txid222863
Maior rinoceronte de um chifre Este estudo KB14498/SB137; NCBI: txid9809
Rinoceronte negro GCA_013634535.1; NCBI: txid9805
Rinoceronte de Sumatra GCA_014189135.1; NCBI: txid89632
White rhinocerosSAMN00778988GCF_000283155.1; NCBI:txid73337
Deposited data
Dados e assemblies de sequência bruta Este estudo Número do Projeto NCBI PRJNA687817
Scripts personalizados para análise de alinhamento de genoma Este estudo https://github.com/liushanlin/rhinoceros-comparative-genome
Software e algoritmos
Remoção do Adaptador v2.2.2 https://github.com/MikkelSchubert/adapterremoval
ALLPATHS-LG v.52485 http://software.broadinstitute.org/allpaths-lg/blog/?page_id=12
ABySS v.2.0.2 https://github.com/bcgsc/abyss
SOAPdenovo2 https://github.com/aquaskyline/SOAPdenovo2
PROCURANDO v.5.0.0 https://busco.ezlab.org/
RepeatMasker Open-4.0.2013-2015 Arian Smit & Robert Hubley http://www.repeatmasker.org/
RepeatRunnerhttps://www.yandell-lab.org/software/repeatrunner.html
Augustus v3.2.3http://bioinf.uni-greifswald.de/augustus/
FOTO https://github.com/KorfLab/SNAP
Criador v2.31.10 https://www.yandell-lab.org/software/maker.html
BWA v0.7.17-r1188 https://github.com/lh3/bwa
ÚLTIMA v1061 https://gitlab.com/mcfrith/last
MULTIZ v11.2 http://www.bx.psu.edu/miller_lab/
ANGSD v0.924) http://www.popgen.dk/angsd/index.php/ANGSD
MAFFT v7.310 https://mafft.cbrc.jp/alignment/software/linuxportable.html
Ferramentas UCSC https://github.com/ucscGenomeBrowser/kent
RaxML v8.2.10 https://github.com/stamatak/standard-RAxML
ASTRAL v5.6.3 https://github.com/smirarab/ASTRAL
DiscoVista v1.0 https://github.com/esayyari/DiscoVista
NW_utiles v1.5.0 https://github.com/tjunier/newick_utils/wiki
EXONERAÇÃO v2.2.0 https://www.ebi.ac.uk/about/vertebrate-genomics/software/exonerate
PAL2NAL v14 https://github.com/drostlab/orthologr/tree/master/inst/pal2nal/pal2nal.v14
MCMCTree v4.8 http://abacus.gene.ucl.ac.uk/software/paml.html#download
PSMC https://github.com/lh3/psmc
SnpEff https://github.com/pcingola/SnpEff
Bcftools v1.8 https://samtools.github.io/bcftools/
GATK v3.8 https://gatk.broadinstitute.org/hc/
IQ-Tree v1.6https://github.com/Cibiv/IQ-TREE

 Disponibilidade de recursos

 Contato principal

Mais informações e solicitações de recursos e reagentes devem ser encaminhadas e serão atendidas pelo Contato Principal: Shanlin Liu ( shanlin.liu@cau.edu.cn ).

 Disponibilidade de materiais

Este estudo não gerou novos reagentes exclusivos.

 Modelo experimental e detalhes do assunto

 Organismos de origem

O espécime do maior rinoceronte indiano de um chifre ( Rhinoceros unicornis ) deriva de uma cultura de células mantida no Zoológico de San Diego (ID = KB14498, SB137) e originalmente deriva de um indivíduo feminino nascido em cativeiro, que por sua vez foi derivado de um pais nascidos (Dam-100288 e Sire-100289). O espécime de rinoceronte preto ( Diceros bicornis ) foi fornecido pela Zululand Rhino Reserve, África do Sul (ID = 46373), e é detalhado no artigo original relatando seu genoma ( ). The Sumatran rhinoceros (Dicerorhinus sumatrensis) sample derives from blood sampled from an individual named Kertam by a staff at the Sabah Wildlife Department in Borneo, Malaysia. Further details on this specimen are detailed in the original paper that released its genome (). O genoma do rinoceronte de Java ( Rhinoceros sondaicus ) deriva de três subamostras de tecido mole seco (dois) e osso (um) retirados de um crânio coletado em 1838 em Java, que atualmente se encontra nas coleções do Museu de História Natural da Universidade de Oslo (Museu de História Natural, Oso; ID do Museu de adesão: 734). O espécime de rinoceronte lanudo ( Coelodonta antiquitatis ) (ID = ND036; um fêmur) foi coletado ao longo do rio Rakvachan (N69° 17,80' E167° 38,53'), na Península de Kyttyk, Chukotka, Rússia. A amostra foi datada por radiocarbono duas vezes, resultando em estimativas de idade por radiocarbono de 46200 ± 2300 14 C anos AP (OxA-36569) e 51980 ± 4900 14C anos AP (MAG-2095). O genoma do unicórnio siberiano ( Elasmotherium sibiricum ) foi gerado a partir de uma subamostra de raio de um espécime (IPAE 915/2804) originário de Tobolsk, Rússia (58°N 68°E) e tem uma idade de radiocarbono > 49.200 14 C anos AP ( OxA-34900). O genoma do rinoceronte da Merck ( Stephanorhinus kirchbergensis ) deriva de uma raiz do primeiro molar (M1) que foi subamostrada de um crânio completo (Aliança Nacional de Shidlovskiy “Ice Age”, Ice Age Museum, Moscou; acesso F-4160) recuperado de o vale do rio Chondon em Yakutia, Rússia (N70° 12′ E137°) e datado entre 48.000 e 70.000 anos BP ( ; ). Por fim, o genoma do rinoceronte branco ( Ceratotherium simum simum ) foi retirado da montagem do Broad Institute que está disponível publicamente em https://www.ncbi.nlm.nih.gov/assembly/GCF_000283155.1/ .

 Detalhes do método

 Isolamento e sequenciamento de DNA

O DNA do rinoceronte de Java foi extraído e preparado para sequenciamento nos antigos laboratórios de DNA do Instituto GLOBE da Universidade de Copenhague, seguindo procedimentos padrão de laboratório limpo ( ; ). O DNA foi extraído de tecido mole seco usando um tampão SDS - DTT - proteinase k ( ) e do osso usando um tampão EDTA-ureia-proteinase k ( ). As bibliotecas foram construídas seguindo o protocolo BEST ( ) com as modificações como em ), e sequenciado na plataforma BGISeq500 na BGI Shenzhen, com estratégia de sequenciamento de 50 PE.
O DNA foi extraído do espécime de rinoceronte lanudo no antigo laboratório de DNA do Museu Sueco de História Natural a partir de 50 mg de pó de osso coletado com uma broca Dremel. Em seguida, extraímos o DNA usando uma versão modificada do protocolo C em ) conforme descrito em ). As bibliotecas de sequenciamento foram preparadas seguindo o protocolo de construção da biblioteca BEST ( ), onde os oligos adaptadores foram projetados sob medida para a plataforma de sequenciamento BGISeq 500 ( ). Libraries were amplified in a 50 μL reaction containing 5 U AmpliTaq Gold polymerase (Applied Biosystems, Foster City, CA), 1× AmpliTaqGold buffer, 2.5 mM MgCl2, 0.4 mg/mL bovine serum albumin (BSA), 0.2 mM each dNTP, 0.2 μM BGI forward primer (), 0.2 μM BGI reverse index-primer () e 10 μL de modelo de DNA da biblioteca. As bibliotecas amplificadas foram sequenciadas em uma plataforma BGISeq 500 na BGI Shenzhen com uma estratégia de sequenciamento SE100.
Extraímos o DNA da raiz do dente de rinoceronte M1 da Merck, conforme relatado anteriormente por and generated data as described in . Briefly, in addition to the DNA extract obtained in Kirillova et al., a second DNA extraction was performed following the previously reported methods () no laboratório de Paleogenômica da Universidade da Califórnia em Santa Cruz. Construímos quatro bibliotecas (single-indexed e double-stranded) para cada extrato de DNA seguindo os métodos relatados por ). O total de oito bibliotecas indexadas foi agrupado e enviado ao SciLifeLab (Estocolmo, Suécia) para sequenciamento em duas pistas da plataforma Illumina HiSeq-X (150 PE). Além disso, uma subamostra foi processada nos antigos laboratórios de DNA do Instituto GLOBE da Universidade de Copenhague, seguindo os mesmos protocolos descritos com o mesmo método de construção de biblioteca para o rinoceronte de Java, e sequenciado em três pistas de dados PE100 em um BGISeq 500 plataforma na BGI Shenzhen.
Uma subamostra foi retirada de um raio (IPAE 915/2804) do unicórnio siberiano e o DNA foi extraído no Australian Centre for Ancient DNA (Universidade de Adelaide) conforme relatado anteriormente por . Uma nova biblioteca de sequenciamento Illumina foi criada para este estudo seguindo o protocolo descrito por com uma etapa adicional adicionada para extirpar citosinas desaminadas com a mistura de enzimas USER (New England Biolabs), conforme descrito por . A biblioteca foi dividida em 8 reações de PCR separadas para minimizar o viés de PCR e manter a complexidade da biblioteca. Cada PCR de 25 μL continha 1 × tampão HiFi, 2,5 mM MgSO4, 1 mM dNTPs, 0,5 mM cada primer (contendo uma combinação única de 7-mer i5 e i7 índices), 0,1 U Platinum Taq Hi-Fi polimerase e 3 μL de DNA . As condições de ciclagem foram 94°C por 6 min; 7 ciclos de 94°C por 30 s, 60°C por 30 s e 68°C por 40 s; seguido de 68°C por 10 min. Após a PCR, as réplicas foram agrupadas e purificadas usando esferas magnéticas AxyPrep de 1,1x volume, eluídas em 30 μL de tampão EB e quantificadas usando um TapeStation (Agilent Technologies). A biblioteca foi sequenciada em três pistas de um Illumina HiSeq X Ten no Garvan Institute of Medical Research (Sydney, Austrália). 4 reações de PCR adicionais foram conduzidas em Estocolmo, Suécia. Cada PCR de 25 μL continha 1x mistura de reação AccuPrime, primer de amplificação IS4 0,3 μM, primer de indexação P7 0,3 μM, polimerase AccuPrime Pfx (Thermo Scientific) 7 U. As condições de ciclagem foram 95°C por 2 minutos, 14 ciclos a 95°C por 15 segundos, 60°C por 30 segundos e 68°C por 1 minuto. As réplicas de PCR foram agrupadas e purificadas usando esferas Agencourt AMPure XP (Beckman Coulter, Brea, CA, EUA), eluídas em 36 μL de tampão EB e quantificadas usando um chip de DNA de alta sensibilidade em um Bioanalyzer 2100 (Agilent, Santa Clara, CA, EUA). A biblioteca foi posteriormente sequenciada em uma pista Illumina HiSeqX com uma configuração de 2 × 151 bp no modo High Output no SciLifeLab (Estocolmo, Suécia).
Para as amostras históricas/antigas de rinocerontes, embora várias bibliotecas de sequenciamento tenham sido construídas e algumas tenham sido sequenciadas com diferentes estratégias de comprimento de leitura, os testes de comparação dos diferentes conjuntos de dados não encontraram diferenças de viés (detalhados na Recursos adicionais ) e, portanto, nós os fundimos para as amostras subsequentes. análises.
DNA de alto peso molecular foi extraído de uma amostra de cultura de células do Zoológico de San Diego (ID = KB14498, SB137) para o rinoceronte de um chifre maior usando um robô de extração Kingfisher duo prime. Bibliotecas livres de PCR Truseq de extremidade pareada com tamanho de inserção de 180 bp e 670 bp foram construídas e sequenciadas na plataforma Illumina HiSeq X no SciLifeLab (Estocolmo, Suécia), gerando aproximadamente 400 milhões de extremidade pareada (2x150 bp) cada. Além disso, três bibliotecas mate-pair (3, 5 e 20 kb) de dois espécimes, uma do Zoológico de San Diego (KB17733) e uma do Zoológico de Rotterdam (IR_104724), foram construídas e sequenciadas para aproximadamente 100 milhões de leituras pareadas (2x150bp ) cada um no Illumina HiSeq X no SciLifeLab (Estocolmo, Suécia).

 Montagem e anotação do genoma

Nós mesclamos as leituras pareadas para todas as amostras de rinocerontes antigas e históricas (unicórnio siberiano, Javan, Merck e rinoceronte lanudo) usando uma versão modificada do AdapterRemoval ( ) que mascarou as bases de conflito que têm qualidades de sequenciamento idênticas a Ns e removeu leituras colapsadas < 30 bp. Em seguida, mapeamos as leituras curtas dessas espécies de rinocerontes em suas referências de genoma correspondentes ( Tabela S2 ) e obtivemos seus genomas (sequências de consenso) usando o módulo doFasta (-doFasta 2) em ANGSD (versão 0.924) ( ) com um requisito mínimo de qualidade de mapeamento e qualidade de base de 20. Uma profundidade mínima de 5 foi definida para o rinoceronte de Java e lanudo, e a profundidade mínima foi definida como 3 para o unicórnio siberiano e o rinoceronte da Merck devido às suas coberturas relativamente menores ( ∼30× para o primeiro par, versus ∼10× para o último par).
Para o rinoceronte de um chifre maior, obtivemos seu genoma usando uma montagem de par de parceiros. Como a qualidade da montagem pode variar para diferentes conjuntos de dados, usamos três montadores diferentes e avaliamos seu desempenho. Os seguintes montadores para dados de sequência de leitura curta foram usados: ALLPATHS-LG v.52485 (HAPLOIDIFY = True) ( ), ABySS v.2.0.2 (-k = 61) ( ) e SOAPdenovo2v. 2,04 (-K 61) ( ). Dos três montadores, ALLPATHS-LG foi selecionado para análises a jusante, pois produziu a montagem mais completa de genes e a montagem contígua (com um andaime N50 de 27,7 Mbp. A completude do gene foi medida com BUSCO v.5.0.0 ( ) usando o conjunto de dados ortólogo “mammalia_odb10”, que mostrou um baixo grau de genes ausentes, fragmentados e duplicados: “C:96,2% [S:95,6%, D:0,6%], F:1,0%, M:2,8%, n :9226.”
A anotação do genoma do rinoceronte branco é seu lançamento original com a montagem do genoma. Como as anotações genômicas do rinoceronte preto e de Sumatra não foram divulgadas com seus conjuntos de genoma, anotamos os genomas do rinoceronte preto, de Sumatra e de um chifre maior da seguinte forma. Primeiro, as repetições foram mascaradas usando RepeatMasker (Smit, AFA, Hubley, R & Green, P. RepeatMasker Open-4.0.2013-2015) com todas as espécies (“model_org=all”) sendo incluídas na RepBase. Em seguida, mascaramos as proteínas do elemento transponível usando RepeatRunner ( ) and the repeat protein library te_proteins.fasta (downloaded from http://weatherby.genetics.utah.edu/data/maker_tutorial.tgz). After that, we applied Ensemble (version 64) () for homolog prediction with its amino acid datasets including Sus scrofa, Tursiops truncatus, Bos taurus, Drosophila melanogaster, Vicugna pacos and Homo sapiens. De novo gene prediction was achieved with: a) Augustus (version 3.2.3) (), where “human” was used as the gene prediction species model for Augustus; b) and SNAP () usando o modelo de mamífero fornecido (mam54). Finalmente, Maker (versão 2.31.10) ( ) foi usado para pesar e mesclar diferentes evidências e obter conjuntos de genes codificadores de proteínas para o rinoceronte de um chifre preto, Sumatra e maior.

 Alinhamento do genoma e inferência filogenética

Os quatro de novo e o genoma da anta ( Tapirus terrestris , GCA_004025025.1) foram alinhados ao genoma de referência do cavalo ( Equus caballus , GCF_000002305.2) usando LAST com parâmetros de -m 100 -E 0,05 ( ), e cada alinhamento de pares foi encadeado e compensado para formar blocos de alta qualidade. Depois disso, as regiões não-sintênicas foram filtradas de cada alinhamento. Finalmente, os alinhamentos locais aos pares foram combinados para gerar um alinhamento final do genoma inteiro multi-espécies (MWGA) usando MULTIZ sem referência fixa e com um raio de 50 em programação dinâmica ( ).
Após gerar o MWGA para todas as de novo , uma análise filogenética baseada em janela deslizante foi conduzida ao longo do genoma do cavalo com um tamanho de janela de 100 kb. Um conjunto de ferramentas do navegador de genoma da UCSC ( ), incluindo mafsInRegion, mafFilter, maf2fasta e vários scripts PERL internos foram aplicados para dividir todo o alinhamento do genoma em sub-regiões. Então, para cada sub-região, incluímos as sequências genômicas das amostras de rinocerontes sequenciadas não de novo , por meio da extração das sequências correspondentes com base nas informações de coordenadas da região em seus genomas de referência, e realizamos o alinhamento de múltiplas sequências usando MAFFT ( ). Também removemos os alinhamentos com comprimento efetivo < 1.000 bp e razão efetiva < 0,5, dos quais os sítios efetivos representam sítios de nucleotídeos que não incluem informações faltantes (Ns) para nenhum táxon no alinhamento de múltiplas sequências. Depois disso, o modelo GTR+CAT do RaxML ( ) foi usado para construir árvores filogenéticas de máxima verossimilhança (ML) para cada janela. Finalmente, a árvore de espécies foi gerada usando o software baseado em modelo coalescente multi-espécies ASTRAL III ( ), combinando todas as árvores regionais.
Devido à baixa qualidade do DNA endógeno recuperado das amostras históricas e antigas, suas sequências genômicas só puderam ser reconstruídas através do mapeamento contra um genoma de referência. Para testar se a escolha do genoma de referência desempenharia algum papel na formação da sequência de consenso recuperada ou na inferência filogenética com base nos dados, usamos as 100 leituras de PE geradas a partir do rinoceronte lanudo e do unicórnio siberiano para examinar o viés de referência por meio do alinhamento de suas leituras curtas em diferentes referências, incluindo o cavalo ( Equus caballus ), branco, maior de um chifre e rinoceronte de Sumatra, respectivamente. Após o alinhamento do genoma, 82 regiões do genoma de comprimento > 20.000 pb foram selecionadas para inferir árvores filogenéticas ( Figura S1 A). Essas regiões foram espalhadas aleatoriamente pelo genoma, tendo assim poucas chances de serem encontradas nos mesmos blocos de recombinação.
Calculamos a frequência de três topologias em torno de cada ramo interno focal da árvore de espécies ( Figura 2 B) usando o DiscoVista ( ) e NW_utils ( ), para as árvores gênicas baseadas em janelas de 100 kb. Uma simulação coalescente multi-espécies também foi aplicada para determinar as distribuições de árvores de genes esperadas com base na árvore de espécies datada usando o pacote Phybase seguindo . Em seguida, inspecionamos a congruência entre a frequência das três topologias inferidas a partir de dados genômicos empíricos e aquela gerada a partir da simulação para a linhagem Rhinocerotinae.
Para validar a robustez da nossa árvore de espécies, também reconstruímos a relação filogenética em cada cromossomo independentemente (referência pelos cromossomos do cavalo) para todas as espécies de rinocerontes que têm de novo e dois grupos externos de anta e cavalo usando as janelas deslizantes de 100 kb mencionadas acima método baseado. Então, para cada cromossomo inferimos uma árvore de espécies e calculamos a frequência da topologia da árvore usando o DiscoVista ( ).
Como uma região genômica com comprimento de 100 kb pode conter vários pontos de quebra de recombinação, amostramos um alinhamento curto com comprimento de 5.000 bp dentro de cada janela deslizante de 100 kb para inferir árvores gênicas usando RaxML ( ) com uma configuração de modelo de substituição de GTR+CAT e 100 réplicas de bootstrap. Em seguida, filtramos as árvores de genes com nós de suporte de bootstrap < 85 para garantir sinais congruentes em cada sub-região. Finalmente, a frequência de três topologias ao redor do ramo de discordância filogenética obvertida com base em janelas deslizantes de 100 kb foi calculada usando o DiscoVista ( ).

 Datação molecular

Ortólogos das espécies com de novo foram extraídos do antigo MWGA verificado por sintenia: 1) a localização do gene e as regiões de exon correspondentes no arquivo de anotação do genoma do cavalo foram usadas para extrair CDSs do alinhamento MWGA pedindo uma cobertura ≥ 80%; 2) as sequências de aminoácidos obtidas do genoma do cavalo servindo como consulta foram usadas para encontrar os homólogos correspondentes para cada espécie usando o modelo protein2genome em EXONERATE ( ); 3) exons que não foram compartilhados por todas as espécies foram removidos para melhorar a precisão do alinhamento gênico; 4) as sequências de aminoácidos foram alinhadas usando MAFFT ( ) e por sua vez usado para orientar o alinhamento CDS usando PAL2NAL ( ). Para as amostras sem de novo , obtivemos seus ortólogos de acordo com as informações de localização do gene e do exon de seus genomas de referência. A fim de diminuir ainda mais a influência potencial do viés de referência, obtivemos duas sequências de genes para cada ortólogo mapeando suas leituras em dois genomas de referência diferentes ( Tabela S2 ) e mesclamos as duas sequências de genes enquanto mascaramos conflitos como "N" (X para aminoácidos).
Inferimos a escala de tempo evolutiva das linhagens de rinocerontes usando um conjunto de 3.513 ortólogos do conjunto identificado na seção anterior (8.820.642 nucleotídeos). O conjunto de ortólogos foi selecionado para minimizar o possível viés nas taxas moleculares decorrentes de análises de número finito de sítios ou discrepâncias excessivas nas taxas moleculares entre linhagens em loci particulares ( ). Para selecionar os ortólogos, primeiro realizamos uma busca rápida em árvore para cada ortólogo, usando apenas rearranjos de árvore NNI, sob um modelo de substituição GTR+R4 ( ) implemented in IQ-TREE v1.6 (). Ortólogos foram considerados adequados para análises de datação molecular se contivessem baixos graus de variação de taxa entre linhagens. ), e se suas árvores de genes não fossem muito distintas da árvore de espécies ( ). Especificamente, os ortólogos retidos tinham árvores gênicas com coeficientes de variação no comprimento da raiz à ponta (sem semelhança de relógio) < 0,1 e distâncias de Robinson-Foulds para nossa árvore de espécies inferida ≤ 2.
Nossas análises incluíram calibrações de tempo em quatro divisões da árvore de espécies, cada uma baseada em várias linhas de evidência do registro fóssil. Os nós foram calibrados usando distribuições uniformes com limites máximos suaves, colocando uma probabilidade de 0,025 em idades mais avançadas. A colocação do limite máximo para um clado assume que clados menos inclusivos não podem ser mais antigos que os fósseis mais antigos de clados mais inclusivos. (i) Nós calibramos a divisão entre Elasmotheriinae e Rhinocerotinae como ocorrendo entre 35 Ma e 44 Ma. Este limite mínimo é suportado pelo registro mais antigo de Rhinocerotinae, com Epiaceratherium naduongense , entre 35-39 Ma ( ), que é inequivocamente uma espécie aninhada dentro de Rhinocerotinae. Evidência adicional para este limite mínimo é a espécie mais antiga atribuída a Elasmotheriinae, Penetrigonas dakotensis , que aparece em ca. 38 Ma ( ). Além disso, a análise cladística morfoanatômica colocou o fóssil Subhyracodon occidentalis como um representante de Elasmotheriinae ( ). O limite máximo é suportado por evidências fósseis e filogenéticas que colocam com alta confiança a idade mínima de Rhinocerotidae em 44 Ma ( ). (ii) A divisão entre Rhinoceros e Dicerorhinus foi calibrada como ocorrendo entre 13 Ma e 23 Ma. A idade mínima é baseada em restos de Siwaliks médios do Paquistão, datados de ca. 13 Ma e inequivocamente atribuído a Dicerorhinus , sob o nome de D. aff. sumatrensis ( ). Outros restos da mesma região e idade confirmam a ocorrência de Dicerorhinus já no Mioceno médio (13,7-11,65 Ma; P.-OA, dados não publicados). O limite máximo é informado pela primeira ocorrência atestada de Rhinocerotina no registro fóssil (rinoceronte de um chifre Gaindatherium cf. browni ; Bugti Hills, Paquistão: 22,6 Ma; ). (iii) A divisão entre Rhinoceros unicornis e Rhinoceros sondaicus foi calibrada como ocorrendo entre 1,9 Ma e 5,3 Ma. O limite mínimo é suportado pela primeira ocorrência de ambas as espécies no registro fóssil ( ). A morphology-based phylogenetic analysis of Rhinocerotina, with a comprehensive sample within Rhinoceros, retrieves the following topology: (R. sondaicus,(R. sinensis,(R. unicornis,(R. kendengindicus, R. platyrhinus)))), with the first occurrence of Rhinoceros platyrhinus estimated at around the Pliocene–Pleistocene transition (2.58 Ma; ). A restrição de idade máxima coincide com a idade estimada mais precoce de Rhinoceros a partir das mesmas análises filogenéticas baseadas em morfologia. (iv) A divisão entre Ceratotherium simum e Diceros bicornis foi calibrada para ocorrer entre 5,3 Ma e 7,3 Ma. Este intervalo é consistente com registros de Diceros bicornis reconhecidos em depósitos do Mioceno superior (> 5,3 Ma) em Lothagam (Quênia, 6,54-5,2 Ma; ) e Albertine (Uganda, 7,25-5,3 Ma; ).
Os dados moleculares tendem a identificar o momento da radiação inicial dos mamíferos como sendo mais antigo do que a evidência fóssil (por exemplo, ; ). Por esta razão, realizamos análises que incluíram uma calibração do quinto nó na idade da coroa de todos os Perissodactyla existentes. Esta calibração foi um limite máximo suave em 66 Ma com uma probabilidade anterior de 0,01 de uma idade mais avançada. A idade deste limite é baseada na ausência de mamíferos placentários da coroa inequívoca antes deste momento. Todas as análises foram repetidas após a exclusão desta calibração para comparação ( Figura S5 A).
Figura miniatura figs5
Figura S5 Análises de datação molecular e seleção de ferramentas de alinhamento, relacionadas à e
Análises de datação molecular adicionais foram realizadas incluindo dados do genoma da anta ( Figura S5 A), portanto, incluindo representantes de todas as famílias vivas de Perissodactyla (Equidae, Tapiridae e Rhinocerotidae). A adição desses dados foi seguida pela filtragem de loci para estimativas de taxa tendenciosas conforme descrito acima, o que levou a um conjunto de dados de tamanho semelhante (3.163 ortólogos com 7.325.631 nucleotídeos). A topologia arbórea das espécies nestas análises aumentadas incluiu a anta como irmã de Rhinocerotidae, enquanto o cavalo permaneceu como grupo externo. Incluímos uma sexta calibração além das descritas acima, desta vez sobre o momento da divisão entre Rhinocerotidae e Tapiridae. A calibração teve um limite mínimo rígido e um limite máximo suave (probabilidade prévia de 0,025 em idades mais avançadas), variando entre 54 Ma e 64 Ma. A idade mínima é baseada na primeira aparição de Tapiroidea no registro fóssil logo após a transição Paleoceno-Eoceno, por volta de 54 Ma, com Vastanolophus holbrooki e Cambaylophus vastanensis na Ásia ( ) e 53,5 Ma com Heptodon na América do Norte ( ). A idade máxima é baseada no registro mais antigo de Notoungulata em ~65 Ma (Tiupampa, Bolívia; ). As extintas ordens sul-americanas Notoungulata e Litopterna formam um clado, irmão de Perissodactyla dentro de Panperissodactyla ( ; ; ), sugerindo, portanto, uma idade semelhante ou anterior para o caule Perissodactyla.
As análises de datação bayesiana foram realizadas usando um modelo de substituição GTR + Γ e um modelo de relógio relaxado -gama não correlacionado, conforme implementado no MCMCtree, parte do PAML v4.8 ( ). We further addressed heterogeneity in molecular evolutionary processes by partitioning the molecular clock and substitution models into each of the three codon positions (three partition subsets). We improved the efficiency of the analysis using approximate Bayesian computation (). The posterior distribution was estimated using Markov chain Monte Carlo (MCMC) samples. After a burn-in phase of 105 MCMC steps, samples were drawn every 103 MCMC steps over a total of 107 steps. We verified convergence to the stationary distribution by comparing parameter estimates from four independent runs. Effective sample sizes were verified to be above 200 for all estimated parameters.

 Seleção de ferramenta de alinhamento

O algoritmo BWA-ALN ( ) é comumente usado para alinhar essas leituras curtas geradas em estudos de aDNA a genomas de referência, devido ao seu desempenho estável para comprimento ultracurto (normalmente menor que 100 bp). No entanto, os dados de simulação mostraram que a taxa de sucesso do mapeamento de leitura das leituras relativamente mais longas (60 bp e 80 bp) caiu cerca de três vezes para leituras de alta divergência (nível de divergência de 3%) usando BWA-ALN ( ). Portanto, comparamos o desempenho do BWA-ALN com o BWA-MEM ( ), nos dados de sequenciamento obtidos para as quatro amostras históricas/antigas ( Figura S5 B). Para BWA-ALN, desativamos a propagação de leitura (-l 1024) para aumentar a tolerância a erros, enquanto marcamos acertos de divisão mais curtos como alinhamentos secundários e os removemos das saídas para o método BWA-MEM.

 Gene flow

To explore for potential gene flow between the different rhinoceros species, we computed D-statistics that assesses genetic affinities between taxa based on patterns of shared derived alleles (). Para uma determinada árvore de topologia (((H1, H2), H3), O), onde O representa um grupo externo, sob a hipótese nula de nenhum fluxo gênico, alelos derivados compartilhados entre H1 e H3, ou H2 e H3, só pode derivam da classificação de linhagem incompleta (ILS) e espera-se que sejam simétricas entre os dois pares. Portanto, o fluxo gênico antigo é assumido entre um par no qual a agregação desequilibrada de alelos derivados compartilhados é detectada. No entanto, devemos estar cientes das limitações da análise da estatística D entre linhagens altamente divergentes - certas suposições podem ser violadas em casos como mutações repetidas ou independentes ( ) e diferenças nas taxas de mutação específicas da linhagem ( ). Mapeamos independentemente todas as leituras brutas de cada espécie de rinoceronte e do cavalo para três genomas de referência diferentes (rinoceronte de um chifre maior, rinoceronte branco e rinoceronte de Sumatra) e, em seguida, calculamos as estatísticas D usando o módulo de função doAbbababa em ANGSD ( ) especificando o cavalo como o alelo ancestral do grupo externo e os seguintes parâmetros de filtragem: 1) use apenas sites onde as leituras do grupo externo tenham a mesma base; 2) qualidade mínima de base e qualidade de mapeamento de 20; 3) utilizar apenas os sítios de transversão, todos os indivíduos possuem profundidade mínima de 3 e máxima de 70; 4) um tamanho de bloco de 5 Mb para estimar os erros padrão usando o procedimento jackknife.
Avaliamos ainda se o mapeamento menos eficiente do grupo externo do cavalo para os genomas de referência do rinoceronte pode estar conduzindo alguns de nossos resultados conflitantes de estatísticas D que diferiram com base na escolha do genoma de referência. Fizemos isso calculando a distância em pares de todas as espécies de rinocerontes ao cavalo do grupo externo três vezes usando todos os indivíduos mapeados para os três genomas de referência diferentes. Calculamos distâncias aos pares em janelas deslizantes de 1 Mb em todos os andaimes > 1 Mb de tamanho usando uma abordagem de chamada de base de consenso (-doIBS 2) em ANGSD. Além disso, aplicamos os seguintes filtros; incluir apenas sites que tenham cobertura em todos os indivíduos, qualidade de base mínima e qualidade de mapeamento de 20, e considerar apenas diferenças de transversão.

 Estimativa de heterozigosidade

Estimamos a heterozigosidade em todo o genoma para todas as espécies de rinocerontes com base em um Espectro de Frequência de Sítio (SFS), dos quais um indivíduo diplóide gerará três estados alélicos: estado do alelo ancestral homozigoto (AA), estado heterozigótico (AB) e estado do alelo derivado de homozigoto (BB). Portanto, a taxa de heterozigosidade no nível do genoma inteiro pode ser calculada como AB/(AA+AB+BB). Aplicamos o módulo da função doSaf (-doSaf 1) em ANGSD (versão 0.924) ( ) para calcular a heterozigosidade em todo o genoma para cada espécie de rinoceronte com parâmetros de: mapeamento único, uma qualidade mínima de mapeamento de 20, uma qualidade de base mínima de 20, um valor de profundidade mínimo e máximo de 1/3 e 2 vezes as profundidades médias do genoma , respectivamente, para cada espécie. Para as amostras antigas e históricas (Javan, Merck, rinoceronte lanudo e unicórnio siberiano), os locais de transição foram removidos (-noTrans 1) para eliminar as influências potenciais de danos no DNA derivados da desaminação de citosina.

 Inferência demográfica e estimativa de execuções de homozigose (ROH)

Aplicamos o método Pairwise Sequentially Markovian Coalescent (PSMC) ( ) para inferir a história das mudanças no tamanho da população nos ancestrais de todas as oito espécies de rinocerontes. Para as espécies para as quais os genomas foram de novo , alinhamos ∼30 × a cobertura do genoma das leituras de espingarda para recuperar as informações de heterozigosidade do genoma diplóide com filtros de profundidade de ≥ 1/3 e ≤ 2 × das profundidades médias. Em seguida, o PSMC foi usado para estimar a distribuição do tempo para o ancestral comum mais recente (TMRCA) entre os dois alelos em todos os cromossomos usando as informações de densidade de sítios heterozigotos em cada genoma diplóide. Mudanças no tamanho efetivo da população (N e ) foram inferidas assumindo uma taxa de substituição (μ) de 2,2 × 10 −8 substituições/local/geração e um tempo de geração (g) de 25 anos para os rinocerontes africanos ( Figura 3 A; ) e um μ de 2,34 × 10 −8 e g de 12 anos para as outras espécies de rinocerontes ( Figuras 3 B e 3C; ; ; ). A consistência dos resultados demográficos foi testada realizando 100 réplicas de bootstrap conforme mostrado na Figura 4 . Os segmentos ROH foram registrados resumindo as regiões do genoma das quais o TMRCA datava de um período de tempo recente (valor K de melhor ajuste de ≤ 2) seguindo o método em .

 Carga genética e identificação para mutação de frameshift específica de rinoceronte

Primeiro, arquivos de anotação gênica dos de novo (rinocerontes brancos, negros, Sumatra e maiores) foram importados para o SnpEFF ( ) para criar um banco de dados de funções genéticas. Em seguida, obtivemos os sítios heterozigotos para cada espécie de rinoceronte usando BCFTOOLS ( ) exigindo: profundidade mínima e máxima de 1/3 e 2x da profundidade média; mapeamento e qualidade de base ≥ 20; qualidade da variância ≥ 30; leia o número de suporte do alelo menor para ≥ 20% da profundidade total. Depois disso, as classes funcionais das variâncias foram estimadas usando SnpEFF ( ) with default settings. We trimmed 10 bp from the 5′ and 3′ ends of each read for the Merck’s rhinoceros and Siberian unicorn to alleviate the impact of DNA damages, because both the samples showed abnormal transition/transversion ratios - as high as 5.367 without end trimming (Figure S4B). However, as the transition/transversion ratio of the Merck’s rhinoceros stayed abnormally high after trimming, which is consistent with previous reports of its DNA damage pattern (Figure S4 in ), nós o excluímos de outras comparações
Para comparar a taxa de mutações missense e de perda de função em rinocerontes com a de outros mamíferos, obtivemos dados publicados de re-sequenciamento para 402 genomas de mamíferos de 30 espécies e mapeamos estes para o genoma de referência filogeneticamente mais próximo disponível para cada espécie (detalhado em Tabela S4 ) usando BWA-MEM v0.7.17 ( ). Em seguida, obtivemos e filtramos chamadas de variantes para cada indivíduo usando o GATK HaplotypeCaller v3.8 seguindo as “diretrizes de práticas recomendadas de descoberta de variantes curtas, incluindo “filtragem difícil” ( ). Além disso, apenas retivemos os sítios bialélicos dentro da espécie e removemos todos os indels e sítios encontrados em uma frequência menor que um terço ou maior que três vezes a cobertura autossômica do genoma. ).
Para investigar o suposto histórico genético de adaptações biológicas únicas de rinocerontes, exploramos mutações de mudança de quadro compartilhadas entre as linhagens de rinocerontes. Inspecionamos as mutações de deslocamento de quadro nos resultados de alinhamento gerados pela análise EXONERATE mencionada acima. Primeiro, todas as mutações de mudança de quadro com suas informações de localização (IDs de genes e IDs de éxons) foram extraídas para espécies de rinocerontes com de novo disponíveis (rinocerontes preto, branco, Sumatra e maior de um chifre). Em seguida, filtramos as mutações de mudança de quadro que compartilham os mesmos locais e existem em todas as quatro espécies de rinocerontes e registramos suas informações genéticas para exames adicionais.

 Teste de heterozigosidade, estimativa de PSMC e ROH para as amostras de rinocerontes não modernos

Como quatro dos genomas de rinocerontes foram gerados a partir de amostras históricas e antigas, os dados só poderiam ser gerados a partir deles por resequenciamento de leitura curta. Além disso, por representarem amostras históricas ou antigas, espera-se que contenham DNA danificado (principalmente desaminação de citosina ( )) manifesta-se como transições C > T/G > A elevadas nas extremidades 5' e 3' das leituras de sequência ( ; ). Portanto, testamos a viabilidade de restringir algumas das análises realizadas apenas às transversões, incluindo estimativa de heterozigosidade, inferência demográfica histórica e estimativa de ROH ( Figuras S3 e S4 ). Além disso, foram avaliadas as influências de outros fatores, como seleção de referência e profundidade de sequenciamento. Para a estimativa de ROH, aplicamos o método de inferência ROH para as quatro espécies de rinocerontes com de novo montagens de genoma Para a estimativa de PSMC, mapeamos leituras curtas representando vários volumes de dados (diferentes coberturas do genoma, 11×, 17× e 35×) do rinoceronte preto no genoma do rinoceronte branco para testar se é possível obter resultados precisos do histórico demográfico usando ler dados de espécies que têm um genoma de referência intimamente relacionado disponível.

 Quantification and statistical analysis

Analyses related to genome assembly, assembly quality evaluation, short read alignment and evolutionary relationship inferences can be found in the Method details section.

 Additional resources

The results of some additional tests could be useful in understanding the sequence dataset for the historic/ancient rhinoceros samples and the comparative genome analyses, and can be found at: https://github.com/liushanlin/rhinoceros-comparative-genome/blob/main/additional_resources.md

Data and code availability

Dados brutos de sequenciamento e conjuntos de genoma podem ser acessados ​​nos bancos de dados do NCBI sob o número do projeto BioProject:PJNA687817. Os scripts personalizados para análise de alinhamento do genoma para o rinoceronte antigo e histórico foram depositados em https://github.com/liushanlin/rhinoceros-comparative-genome .

Agradecimentos

Os autores agradecem o apoio do Laboratório de Ciência para a Vida, do Instituto Garvan de Pesquisa Médica, da Fundação Knut e Alice Wallenberg e da Infraestrutura Nacional de Genômica, financiada pelo Conselho de Pesquisa Sueco e pelo Centro Multidisciplinar de Uppsala para Ciência Computacional Avançada, pela assistência com sequenciamento massivamente paralelo. e acesso à infraestrutura computacional UPPMAX. Agradecemos ao Museu de História Natural da Universidade de Oslo por fornecer a amostra do rinoceronte de Java. Agradecemos ao Museu do Instituto de Ecologia Vegetal e Animal (UB RAS, Ekaterinburg) por fornecer a amostra de unicórnio siberiano. O MTPG foi apoiado pela concessão Consolidadora 681396 do Conselho Europeu de Pesquisa (ERC) (Extinction Genomics). A EDL foi apoiada pela concessão 8021-00218B do Independent Research Fund Denmark. AC foi apoiado por um Australian Research Council Laureate Fellowship (FL140100260). O TMB é apoiado pelo financiamento do ERC no âmbito do programa de pesquisa e inovação Horizonte 2020 da União Europeia (convênio 864203), doação BFU2017-86471-P (MINECO /FEDER, UE), “Unidad de Excelencia María de Maeztu” financiado pela AEI ( CEX2018-000792-M ), Howard Hughes International Early Career , e Secretaria d'Universitats i Recerca e CERCA Program del Departament d'Economia i Coneixement de la Generalitat de Catalunya ( GRC 2017 SGR 880 ). LD foi apoiado pelo Conselho de Pesquisa Sueco ( 2017-04647 ) e Formas ( 2018-01640 ). Agradecemos a Dmitry Bogdanov e Roger Hall por nos darem permissão para usar sua arte de rinoceronte.

Contribuições do autor

SL, LD e MTPG conceberam o projeto e desenharam a pesquisa. M.-HSS, KJM, SV, PK, IK, AC, BS e GZ forneceram trabalhos arqueológicos, logística e/ou amostras e dados antigos. FS-B., YM, MB, TvdV, OR, CS e LGRB-vS coordenaram a logística de e/ou forneceram amostras e dados modernos. M.-HSS, ND, KJM, PDH, JDK, JvS, HH, CG, GM e CY realizaram trabalho de laboratório. SL, RA-O., DAD, MVW e LC conduziram análises de dados com entrada considerável de AM, TvdV, SG, PDH, TM-B., P.-OA, LD e MTPGSL, MVW, ND, KJM, PDH, DAD, FS-B., AM, BDC, YM, KR, AL, TM-B., SG, EDL, RRD, BS, P.-OA, LD e MTPG interpretaram os resultados e redigiram o artigo com a contribuição de todos os outros autores.

Declaration of interests

The authors declare no competing interests.

Supplemental information

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Bonecos

  • Figura miniatura fx1
    Resumo gráfico
  • Figura miniatura gr1
    Figura 1 Faixas das oito espécies de rinocerontes estudadas
  • Figura miniatura figs1
    Figura S1 Inferências de relacionamento filogenético, relacionadas à
  • Figura miniatura gr2
    Figura 2 Filogenia dos Rhinocerotidae
  • Figura miniatura figs2
    Figura S2 Análises estatísticas D, relacionadas à
  • Figura miniatura figs3
    Figura S3 Estimativas de heterozigosidade, relacionadas à
  • Figura miniatura gr3
    Figura 3 Comparação da heterozigosidade de todo o genoma estimada em vários táxons e distribuição de ROH nas oito espécies de rinocerontes
  • Figura miniatura figs4
    Figura S4 Testes para ROH, PSMC e estimativas de efeito gênico, relacionadas às , e
  • Figura miniatura gr4
    Figura 4 Trajetória demográfica das oito espécies de rinocerontes
  • Figura miniatura gr5
    Figura 5 Efeito variante do genoma de uma ampla gama de espécies de mamíferos
  • Figura miniatura figs5
    Figura S5 Análises de datação molecular e seleção de ferramentas de alinhamento, relacionadas à e

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